小儿遗传性球形红细胞增多症是怎么引起的

一、发病原因

本病溶血的主要原因是先天性红细胞膜蛋白基因突变导致的红细胞膜异常，HS的分子遗传学异常主要包括锚蛋白和膜收缩蛋白联合缺乏，带3蛋白缺乏，单纯膜收缩蛋白部分缺乏和4。2蛋白缺乏，以锚蛋白和膜收缩蛋白联合缺乏最常见，上述膜蛋白异常可导致膜骨架与膜之间的垂直方向相互作用减弱，从而使膜脂质双层变得不稳定，部分脂质以出芽形式形成囊泡而丢失，红细胞膜表面积减少，最终使红细胞形成小球形，另外，HS红细胞（特别是经过脾脏的红细胞）都有一定程度的脱水和对单价离子通透性异常，这可能也与膜骨架缺陷有关，由于球形细胞内容积储备很低，其变形性能因而降低，难于通过直径比其本身小得多的脾微循环而阻留于脾髓内被吞噬和清除，在脾脏，还可能由于红细胞被阻留于脾髓内的时间长，红细胞ATP生成不足，pH值下降，使红细胞更易变为球形，此外，由于本病红细胞内的ATP相对缺乏，使红细胞的除钙作用减弱，钙沉积于细胞膜上而使膜变硬，因而在脾内更易于破碎，未破坏的红细胞多次经过脾循环后，其脆性进一步增加，球形更明显，在脾内易于破坏，实验证明，脾切除后贫血的纠正程度与红细胞膜收缩蛋白的原有缺乏程度有关，收缩蛋白〉正常70％者，术后贫血可完全纠正；为正常40％～70％者，可得到代偿；〈正常40％者术后仍有贫血，所幸〈40％的病例常为隐性遗传患者，临床少见。

二、发病机制

1、病理生理

（1）阳离子含量的改变与渗透性：红细胞内外物质交换需要通过细胞膜，红细胞内外无机离子，糖等的浓度差别很大，它们的转运都有各自的机制，正常红细胞通过Na/K泵维持细胞内Na/K正常比例，Na/K泵每作用1次即有3个Na泵出细胞外，2个K泵入细胞内，使红细胞内呈高钾低钠状态，而HS红细胞，特别是从脾脏收集的红细胞存在脱水异常和对单价离子的通透性异常，推测是骨架蛋白缺乏的结果，钾和水选择性丢失的途径被激活引起细胞的脱水异常，如脾脏的相对低pH值和氧化作用的损伤以及红细胞在脾脏与巨噬细胞接触产生氧自由基可刺激K/Cl-联合输送器，此外，在HS红细胞，调节细胞内钠和钾含量的Na/K泵的活动是亢进的，因为每2个原子的钾转运进入细胞内，3个钠原子从细胞内被挤出，泵的功能亢进将导致红细胞脱水以免红细胞肿胀，破坏，蛋白4.2缺乏的HS红细胞有阴离子输送增加，而血影蛋白，锚蛋白或带3缺乏的HS红细胞阴离子输送正常或输送减少。

（2）非变形性球形红细胞在脾脏的滞留：脾脏在HS发病中病理生理机制的重要性众所周知，脾脏选择性破坏HS红细胞有两个因素：一是HS红细胞变形性不良，二是脾脏血管系统的独特解剖构造充当“微循环过滤器”的作用，由于表面物质缺失引起红细胞表面积与体积的比值减少，从而导致红细胞变形性差是发病中的主要因素，正常的盘状细胞具有丰富的表面，允许红细胞变形并通过狭窄的微循环信道，而HS红细胞缺少这部分可变形的额外表面，变形性不良可由于细胞的脱水更进一步加重，红细胞在脾脏滞留的主要部位是脾脏窦孔的壁，来自脾脏红髓脾索的血液进入静脉循环，在大鼠的脾脏，孔的长与宽分别为2～3μm和0.2～0.5μm，约为红细胞直径的一半，脾标本的电子纤维照片显示只有非常少量的HS红细胞穿过此部位，因此，在切除的脾脏可以观察到解剖部位的非变形性球形红细胞堆积于红髓，使红髓充血变粗。

（3）脾脏对红细胞的调节与破坏：HS红细胞由于表面区域缺失和细胞密度的增加，一旦经脾脏扣留将经受附加的损伤，在脾切除时有红细胞移出脾脏就是证据，这些经脾脏处理过的红细胞重返血液循环，可以通过渗透脆性检测出这部分细胞群，脾切除后，这些红细胞群消失，早期通过模拟脾脏条件（包括低pH值，隔离的红细胞可以与网状内皮系统接触等）进行HS红细胞的体外培养研究显示，糖缺失和接踵而来的细胞内ATP的缺乏并非HS红细胞在脾脏破坏的原因，脾脏条件的影响显示出的是累积的损伤，HS红细胞在脾索停留的时间平均为10～100min，只有1％～10％流经脾脏的血液是暂时滞留于脾脏并充满脾索，其余的90％血液迅速流入静脉循环，虽然HS红细胞主要在脾脏扣留和破坏，但HS细胞也在其他外周的器官被破坏，HS红细胞表面改变触发网状内皮系统吞噬作用的机制尚不清楚，一个途径可能是脂质双分子层结构内磷脂的破坏，导致磷脂酰丝氨酸外侧暴露，促进红细胞附着于网状内皮系统，使其在脾脏以外的其他器官被吞噬破坏，虽然磷脂在两个脂质双层内的分布在绝大多数HS患者是正常的，但在一些严重的HS患者有磷脂分布的异常改变，还有一种猜测，经脾脏处理过的末期HS红细胞具有磷脂不均匀的发生。

2、分子机制

正常红细胞的膜是有非酯化胆固醇和糖脂插入的不对称性磷脂双层结构，膜的外层为胆碱磷脂（磷脂酰胆碱也称卵磷脂和鞘磷脂），内层为氨基酸磷脂（磷脂酰氨基乙醇和磷脂酰丝氨酸），红细胞膜也含有不对称的蛋白成分，所有的糖蛋白暴露于膜的外侧表面，具有红细胞抗原和受体或转运蛋白，这个整体的膜蛋白穿透或跨越脂质双层，与疏水脂质的核心部位相互作用并且紧紧地束缚红细胞膜，一个独立的蛋白网络与整体膜蛋白和脂质双层形成垂直和水平相互作用的膜骨架，膜骨架包括血影蛋白（或称收缩蛋白，又分为α和βspectrin），锚蛋白（ankyrin），蛋白4.1，蛋白4.2和肌动蛋白，HS被分为以下5种亚型：单一血影蛋白部分缺乏，血影蛋白与锚蛋白连接部分缺乏，带3部分缺乏，蛋白4.2缺乏和其他少见的共同缺乏。

3、表面区域缺乏的分子

基础遗传性球形红细胞固有的特性是不稳定，如在三磷腺苷（ATP）缺乏或细胞应急切变暴露于体外变化条件下释放脂质，膜物质的丢失通过0.2～0.5μm的含有血影蛋白的膜内在蛋白质的小囊泡释放，通过体外培养实验中渗透脆性增加可以证实，膜物质的丢失是膜表面区域缺乏至一定程度所致的结果，在单一血影蛋白缺乏或血影蛋白与锚蛋白联合缺陷的病例，表面区域缺乏包含来自骨架蛋白下的脂质双层膜不匹配，正常红细胞的骨架蛋白形成一个接近单分子的亚膜层，占据一半以上的膜表面，因此，血影蛋白缺乏导致这个网络密度减低，结果，从细胞内以微囊泡形式释放的骨架蛋白不直接支持脂质双层膜的区域，在带3蛋白缺乏的HS病例，两个假设的途径可能导致表面区域的丢失，一个机制包括带3蛋白从细胞丢失，由于带3蛋白跨越脂质双层膜许多倍，可能“边界”脂质的实质总量与带3蛋白一同释放，因此，导致表面区域缺乏，另外一种可能的机制是在膜内存在无带3的区域形成，进而形成膜大泡，以微囊泡的形式从细胞内释放，这个假设基于发现了残影细胞膜内颗粒的集簇性（带3蛋白的主要组成）导致膜脂质大泡而非微囊泡的颗粒去除区域形成，近年的证据来自带3敲除鼠的模型，缺乏带3的红细胞本能地脱出囊泡，导致严重的球形红细胞增多和溶血。

4、HS与非红系临床表现

在大多数HS病例，临床表现被限定为单一的红细胞系统，可能由于红细胞膜蛋白（如血影蛋白和骨架蛋白）的非红系副本被独立基因编码或是由某些蛋白（如蛋白4.1，β-血影蛋白和骨架蛋白）从属于组织特有的选择性剪切，但也有例外，报道个别HS家族有脊髓变性性改变的联合神经分离或肌肉异常，心肌病或记忆力减退，红细胞骨架蛋白和β-血影蛋白在肌肉脑组织及脊髓也同样存在，提高了这些病例缺乏其中某种蛋白的可能性，这个假说将进一步通过nb突变鼠的HS模型来证实，纯合子nb/nb鼠具有与血影蛋白和基本分子缺陷骨架蛋白缺乏有关的严重HS，病情进展可成为与小脑Purkinje细胞变性性改变相吻合的神经综合征，Purkinje细胞通常表达红细胞骨架蛋白，而在nb/nb鼠的表达是减低的，带3缺乏在常染色体显性遗传的远端肾小管性酸中毒的患者中也得到证实，杂合子带3基因突变的病例具有正常的肾酸化作用和异常的红细胞，两个带3突变，即R589H和S613F，与肾脏的酸化作用减低和正常的红细胞有关，有报道证实由于带3mRNA加工突变导致两个Hs家族出现并发肾脏酸化作用减弱的病例，带3Pribram和带3Okinawqa，在这些病例中，肾小管性酸中毒的确切发病机制尚不清楚。

5、遗传性

基于HS的非单一性分子基础，推测HS的基因可分为几种染色体的改变，目前发现的染色体异常有1，8，14，15及17的异常，与α-血影蛋白相关的为1号染色体，与锚蛋白相关的为8号染色体，与β-血影蛋白相关的为14号染色体，与蛋白3相关的为17号染色体，与蛋白4。2相关的为15号染色体，在绝大多数的HS患者（约75％），属常染色体显性遗传，少部分患者为非显性遗传，这部分病例可归属于基因突变，突变的位置在CpG二核苷酸，造成该部位小的缺失或插入，这也可能形成常染色体隐性遗传，有报道证明，部分隐性遗传的HS患者伴发严重的溶血性贫血，这部分患者主要倾向于红细胞血影蛋白的缺乏，推测主要为α-血影蛋白的缺乏，另外一部分隐性遗传的患者为蛋白4.2缺乏，表现为轻度溶血，红细胞形态为口形和卵圆形，极少病例为纯合子，表现为严重的溶血性贫血，有的患者溶血发生后可能是致死性的，他们的双亲症状很轻或无症状，HS可以以家族的形式发病，但临床上这样的情况并不多见，下述几点可以解释这些现象。